細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮低溫保存，可以使細胞暫時脫離生長狀態而將細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。適度的保存一定量的細胞，可以防止因正在培養的細胞被污染或其他意外事件而使細胞丟種，起到細胞保種的作用。

貼壁細胞凍存操作步驟：

1. 制備凍存液，凍存液比例：實驗室采用90% FBS+10% DMSO；

2. 取形態良好，處于對數生長期的細胞，吸出舊培養基，加PBS沖洗一次；

3. yi酶消化細胞，鏡下觀察細胞，待細胞全變圓后，加全培養基終止消化，800g離心5min收集細胞；

4. 棄去離心管上清液，加入凍存液重懸細胞，小心打開凍存管管蓋，每管分裝1-1.5mL含細胞的凍存液，擰緊蓋管，做好標記；

5. 分裝好的凍存管轉入程序降溫盒后直接放-80℃過夜；

6. 若沒有程序降溫盒，則按下列順序依次降溫：

室溫→4℃20min→-20℃30min→-80℃過夜，注意轉移過程中要保冷，避免產生溫差或凍存管融化；

7. 從-80℃冰箱取出凍存管迅速轉移到液氮長期保存。

注意事項：

1. 必須始終穿戴適當的個人防護設備，手套污染時應當更換，將用過的手套與其他污染的實驗室廢物一起處置。

2. 實驗前和實驗后需要滅菌處理，實驗前，實驗臺打開紫外燈照射20-30分鐘，實驗后需要用75%酒精擦拭超凈臺、邊臺、倒置鏡的載物臺。

3. 凡是帶入超凈工作臺內的酒精、PBS、培養基、 yi蛋白酶的瓶子均要75％酒精擦拭瓶子的外表面，靠近酒精燈火焰操作。

4. 凍存時細胞濃度低于1-5×106個/ml。

5. 凍存前注意切勿消化時間過長、吹打力度過重、離心轉速過大或離心時間過長，以免造成細胞損傷。

6. 凍存細胞長期保存應放置于液氮，不建議在-80℃長期保存。

7. 細胞離心后盡量吸干凈上清液，減少培養基殘留，避免稀釋凍存液。

8. DMSO溶于培養基時，將釋放大量熱量，所以細胞凍存液需提前配制，冷卻后再使用，不能直接將DMSO加入含有細胞的培養基中，避免燙傷細胞。